1.1动物饲养环境
KM小鼠，SPF级，20~22g，饲养于奥创生物动物房中，室温22℃～25℃，湿度50%±5%，明、暗各12 h，试验期间小鼠自由摄食和饮水。
1.2实验材料
实验药品：水合氯醛，生理盐水。
实验器材：碘伏，碘伏棉，酒精棉，手术剪，镊子，1mL注射器，缝合针，4-0号缝合线，10mL注射器针头，无菌纱布，去毛器，小鼠固定板。
1.3实验前准备
（1）进行手术前，小鼠禁食12h。
（2）所有实验用具均进行消毒灭菌处理，使用前放置在75%乙醇中。
1.4动物麻醉
手术前腹腔注射水合氯醛对小鼠进行麻醉，给药体积0.1mL/10g，水合氯醛浓度为3%，溶于生理盐水中，现配现用。
1.5造模方法
（1）对麻醉后的小鼠下腹部进行备皮，采用俯卧位固定在手术板上，使用酒精棉和碘伏棉对下腹部进行消毒。
（2）使用手术剪沿腹中线逐层剪开皮肤、肌层和腹膜,找到盲肠。
（3）在开口处垫放无菌纱布，用无菌镊取出盲肠放于纱布上，剥离肠系膜。
（4）使用4-0号缝合线在距离盲肠末端1/2或1/3处进行结扎，并采用20G针头对末端盲肠进行穿刺1-2次，并挤出一定量的肠容物。
（5）将盲肠放回腹腔中，逐层缝合腹腔，再次使用碘伏消毒。
盲肠结扎穿刺造模流程：
造模24h后，取血，离心后取血清检测ALT、AST含量，取肝、肺、脾、回肠进行HE染色检测。
盲肠穿刺结扎24h后解剖对比结果：
盲肠结扎24h后，小鼠出现精神状态不佳、行动缓慢、蜷缩抱团。解剖后模型组肠道粘连，空肠充气，出现明显水肿，盲肠结扎段存在明显的病变。并在解剖时伴随着明显的腐烂气味。
血清中ALT、AST检测结果（血清中ALT和AST含量）：
对比发现，小鼠造模24h后，血清中ALT和AST含量显著上升，与对照组存在明显差异。
HE染色形态学检测（对不同组织器官的影响（HE，200x）：
经病理学检测，模型组病变严重，其中回肠中可见少量炎细胞浸润和肠腺扩张，较少量杯状细胞减少；肺组织出现少量气道壁增厚和炎细胞浸润，较少量肺泡塌陷；肝组织中大量脂肪变性，少量肝细胞病变坏死/核消失；脾脏中较多淋巴细胞坏死。对照组各组织均无明显病变。
实验结论：
通过对小鼠盲肠进行结扎穿刺，血清中肝损伤指标AST和ALT显著上升，且肝、脾、肺和回肠均出现了一定程度的损伤，其中回肠和肺损伤最为明显，表明盲肠结扎穿刺模型能有效诱导全身性炎症，但具体的损伤机制仍需进一步研究。
实验小结：
3.1、术后管理
（1）术后可在背部皮下注射生理盐水1ml，补充手术遗失的体液。
（2）在饲养笼中放置适量泡软的饲料，方便术后小鼠进食。
（3）术后要对动物进行一定的保温措施，避免体温过低。
（4）术后每隔一段时间观察小鼠精神状态和死亡情况。
3.2、注意事项
（1）实验所用器具均要消毒，避免细菌感染。
（2）在开腹和穿刺时应避开血管，避免出血。
（3）术后要多观察小鼠状态，及时发现死亡小鼠。
（4）将盲肠放回到腹腔内，注意不要将盲肠上的粪便扩散到腹壁伤口边缘引起感染。
3.3、模型优化
（1）若想提高模型严重程度，可增大结扎盲肠比例，增加穿刺次数。但死亡率会显著升高。
（2）可在穿刺孔处穿线，留下大于盲肠直径的线圈，引导肠容物持续流出，避免伤口愈合或被封堵。
